DNA变性缓冲液配制全攻略（1L）：称取87.7g NaCl和20g NaOH，溶于800mL去离子水，定容至1L，室温保存。核心用途：Southern blot中转膜前的DNA碱变性处理，使双链DNA变为单链以便与探针杂交。关键提醒：NaOH具强腐蚀性，需戴手套护目镜；长期放置会吸收CO₂导致···
鲑鱼精DNA（Salmon DNA，10mg/mL）配制全攻略（约100mL）：称取2g鲑鱼精DNA溶于200mL TE Buffer，室温搅拌2-4小时，加4mL 5M NaCl至终浓度0.1M，酚和酚/氯仿各抽提1次，乙醇沉淀后重溶于100mL去离子水，OD260定量后稀释至10mg/mL，煮沸10分钟分装，-20℃保存。···
溴乙锭溶液配制全攻略（100mL，10mg/mL）：称取1g溴乙锭，加去离子水定容至100mL，搅拌至完全溶解，转移至棕色瓶室温避光保存。工作浓度为0.5μg/mL（即1:20000稀释）。核心用途：DNA琼脂糖凝胶电泳染色。关键提醒：溴乙锭是强致癌物，必须在通风橱中操作，佩···
10×Loading Buffer配制全攻略（10mL）：200μL 0.5M EDTA（pH8.0）+ 25mg溴酚蓝 + 25mg二甲苯青FF + 5mL甘油，DEPC处理水定容至10mL，室温保存。核心用途：RNA甲醛变性琼脂糖凝胶电泳上样缓冲液，实时监控电泳进程。关键提醒：用于RNA电泳时，配制用水必须使···
6×Loading Buffer配制全攻略（500mL）：称取4.4g EDTA、250mg溴酚蓝、250mg二甲苯青FF，加入180mL甘油，用2N NaOH调pH至7.0，定容至500mL。使用时按1:5比例与样品混合（1份Buffer + 5份样品）。关键提醒：甘油低温结晶属正常现象，37℃水浴复溶即可。核酸电泳···
10×MOPS缓冲液配制全攻略（1L）：称取41.8g MOPS溶于700mL DEPC处理水，用2N NaOH调pH至7.0，加入20mL 1M NaOAc（DEPC处理）和20mL 0.5M EDTA（pH8.0，DEPC处理），定容至1L，0.45μm滤膜过滤，室温避光保存。核心用途：RNA甲醛变性琼脂糖凝胶电泳核心缓冲液···
琼脂糖凝胶配制全攻略：选择合适缓冲液（0.5×TBE或1×TAE），微波炉加热熔化琼脂糖（注意暴沸风险），冷却至60℃加溴乙锭（终浓度0.5μg/mL），倒胶凝固。附琼脂糖凝胶浓度与线形DNA最佳分辨范围对照表（0.5%~2.0%对应50bp~30kb）。关键提醒：制胶与电泳缓冲···
10×TBE缓冲液配制全攻略（1L）：称取108g Tris碱、55g硼酸、7.44g Na₂EDTA·2H₂O，定容至1L，pH自然稳定在8.3，室温保存。使用时稀释10倍（100mL母液定容至1L）即得1×TBE工作液。关键提醒：TBE缓冲容量强于TAE，适合长时间电泳，但硼酸可能抑制酶活性，酶···
50×TAE缓冲液配制全攻略（1L）：称取242g Tris碱、37.2g Na₂EDTA·2H₂O，加入57.1mL冰乙酸，定容至1L，室温保存。使用时稀释50倍（20mL母液定容至1L）即得1×TAE工作液。关键提醒：TAE缓冲容量较小，不建议长时间电泳（如过夜）；低温出现沉淀属正常现象，···
10×TE Buffer配制全攻略（1L）：100mL 1M Tris-HCl（pH7.4/7.6/8.0）+ 20mL 0.5M EDTA（pH8.0），定容至1L，高压灭菌，室温保存。使用时无菌水稀释10倍即为1×TE。关键提醒：用于RNA保存时需用DEPC处理水配制；低温沉淀属正常现象，37℃水浴复溶即可。DNA/RN···
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